Qué hacemos…

Proyectos generales del grupo

Una vacuna eficaz

Durante más de cuarenta años se ha intentado inmunizar al bovino contra el protozoo que causa la tricomonosis. Hasta el momento ha sido imposible obtener una vacuna que ayude a prevenir la infección.

Esperamos que una vacuna para la tricomonosis ayude a evitar la infección y hasta ayude a tener más terneros. Pues, hasta ahora no ha sido posible evitar la infección y no se ha demostrado de una manera adecuada que pueden obtenerse más terneros.

Una buena vacuna hoy ayuda a reducir el tiempo de infección. Si un lote de vacas no está vacunado y se infecta con T. foetus podemos encontrar que la mitad de los animales estará infectado 70 días después de la infección. En un lote similar que ha sido vacunado, encontraremos menos animales infectados en el mismo tiempo.

Cuando se emplea una vacuna comercial la mitad de las vacas se encontraré sin infección después de sólo 55 días y con una vacuna desarrolló nuestro grupo junto al grupo de sanidad animal de la EEA INTA Anguil, la mitad de las vacas estarán sanas en 35 días.

Para muchos puede resultarmás claro expresado de otra manera. Si la mitad de animales no vacunados aparecen sanos a los 70 días, una vacuna comercial distribuída desde hace diez años permite hoy que el número de animales sin infección en el mismo tiempo sea de poco más de 2/3 (2 animales sanos por cada enfermo). Con una vacuna producida por nuestro grupo la cantidad de animales sin infección en el mismo tiempo es sólo de 5/6 veces mayor (cinco sanos por cada enfermo).

Riesgo de remisión de infeccion en animales no inmunizados (C),
inmunizados con una vacuna comercial (TV)
o inmunizados según con una nueva vacuna (QAl)
desarrollada en colaboracion (Fuchs et al 2016)

Esto es muy importante porque hemos demostrado que se puede avanzar. Para nosostros esto es poco, porque esperamos que ninguna vaca pueda infectarse.

Una nueva prueba diagnóstica

La única forma de control aconsejada para la tricomonosis es el diagnóstico y el sacrificio de animales portadores. El diagnóstico se realiza mediante cultivo microbiológico, de bajo costo, baja sensibilidad y baja especificidad, o con ayuda de una técnica molecular costosa, la qPCR, de alta sensibilidad y especificidad cuando se realiza en condiciones apropiadas.

Entre estas dos técnicas vigentes se encuentra una desarrollada por nuestro grupo. En 2013 dimos a conocer una técnica basada en la amplificación isotérmica de ADN para el diagnóstico de T. foetus. En 2018 adelantamos una nueva prueba más sensible y demostramos sus ventajas respecto de las pruebas vigentes.

Esta prueba ha sido optimizada y se ha mejorado desde entonces. El LAMP para detección de T. foetus hoy alcanza una sensibilidad similar a las mejores pruebas de laboratorio y puede ser usada en cualquier laboratorio, incluso a campo.

Esta prueba puede subsanar muchos inconvenientes ligados a la reproducibilidad de resultados entre laboratorios y reducir los costos para el laboratorio y el productor.

Lectura directa de fluorescencia en la detección de ADN de Tritrichomonas foetus
en fluído prepucial bovino
Izquierda: positivo, Derecha: negativo

Un tratamiento eficaz

Un animal infectado con T. foetus puede ser “curado” a través de varias drogas que se han demostrado eficaces. Sin embargo el uso apropiado no está al alcance de cada profesional y son necesarias nuevas drogas y tratamientos.

Nuestro grupo evalúa nuevas drogas y tratamientos en la medida de los recursos disponibles. Hemos hallado una combinación de drogas de uso corriente muy efectiva contra T. foetus in vitro. Junto a la Dra R. Ramírez hemos identificado plantas con efectos tóxicos para T. foetus.

Evaluación de la inhibición del crecimiento de Tritrichomonas foetus.
La ausencia de crecimiento se revela por el color azul.

Publicaciones del laboratorio

Oyhenart J. (2020). Retrospective cohort study for the identification of true-positive farms over 12-year of enforced program for Tritrichomonas foetus eradication in La Pampa, Argentine. VPRSR. En prensa.

Oyhenart J.(2020) Zero inflated count regression for one year prediction of bovine trichomonosis in a compulsory control plan in La Pampa, Argentine. VPRSR. 20 (2020) 100394

Oyhenart J. (2019) Major factors associated to persistence of bovine trichomoniasis in a mandatory control plan: A eight year retrospective study in La Pampa, Argentine. VPRSR 18 (2019) 100328

Oyhenart J. (2018) Direct detection of Tritrichomonas foetus in cattle genital fluid trough loop mediated isothermal amplification of elongation factor 1 alpha 1. Vet Parasitol. 261: 67-72

Gracia Martinez F; Fuchs L; Ramirez R; Breccia J; Oyhenart J. (2018) Evaluation of Tritrichomonas foetus infection clearance in heifers immunized with a single intravaginal dose of formaldehyde fixed strain B1 cells. Vet Parasitol. Vol 255: 32-37

Fuchs L, Fort M, Cano D, Bonetti C, Giménez H, Vázquez P, Bacigalupe D, Breccia J, Campero C , Oyhenart J .(2017) Clearance of Tritrichomonas foetus in experimentally infected heifers protected with vaccines based on killed-T. foetus with different adjuvants. Vaccine. 2017 Mar 1;35(9):1341-1346.

Oyhenart J, Breccia J. (2014) Evidence for repeated gene duplications in Tritrichomonas foetus supported by EST analysis and comparison with the Trichomonas vaginalis genome. Vet Parasitol. 206(3-4): 267-76.

Oyhenart J, Gracia Martínez F, Fort M, Ramirez R, Breccia J. (2013) Loop mediated isothermal amplification method based on 5.8S ribosomal DNA sequences for specific detection of Tritrichomonas foetus. Veterinary Parasitology. 193(1-3): 59-65

Fort M, Baldone V, Fuchs L Gimenez H, Rojas M, Breccia JD, Oyhenart J. (2012) Experimental infection of rabbits (Oryctolagus cuniculus) with Brucella suis biovar 1 strains isolated from wild hares (Lepus europaeus). Vet Microbiol. 156(3-4): 439-42.

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